A fő kártevők vagy kórokozók diagnosztizálásának és megfigyelésének módszerei

Ez az oldal az Útmutató Dokumentumok Könyvtárának (RDO) része.

Amerikai rosszindulatú

A méhésznek rendszeresen ellenőriznie kell telepeinek fészkét, különösen azokban az időszakokban, amikor a méhek tavasszal, nyáron és ősszel aktívak. A fiasítás kereteinek szemrevételezésénél figyelnie kell az amerikai fertőzöttség jeleire: rendellenes megjelenésű, mozaik fiókák, rendellenes megjelenésű, beesett vagy áttört kopoltyúk, sötétek és zsírosak. A fertőzött fésűk jellegzetes halszagot árasztanak. Minden rendellenes színű fiókát gondosan meg kell vizsgálni jó fényben és olyan szögben, amely lehetővé teszi a sejtek alsó falának jól láthatóvá válását. A fertőzött lárvákat sejtjeik aljáig vagy faláig zúzzák, és nyálkás bézs vagy sötétbarna tömeget alkotnak. Előfordul, hogy a nimfa nyelve egyenes és az alveolus falához van rögzítve. A fiasítás fésűinek alapos vizsgálata során kiderül, hogy a sejtek falához tapad a pikkely (régi, elhalt lárvák, amelyek fekete kemény tömeget alkotnak).

A fertőzés igazolásához az aljzat tartalmát gallyal, gyufával vagy fogpiszkálóval kell keverni. Ha a fészket az amerikai szaporítómadár befolyásolja, akkor egy rugalmas ragacsos masszát fogunk észrevenni, amely 2 cm fölé nyúlhat anélkül, hogy szakítani. A diagnózis mikroszkópos vizsgálattal vagy molekuláris elemzéssel is megerősíthető. A spórák keskeny, láncokban elrendezett rudakra hasonlítanak. A méhész kapcsolatba léphet a megfelelő szabályozó hatósággal, hogy megerősítse diagnózisát, vagy jelentse a betegség esetét.

Európai fertőzöttség

A méhésznek rendszeresen ellenőriznie kell a csalánkiütését, különösen tavasszal és nyár elején. Az európai fertőzöttséget gyakran más sebezhetőségi tényezőkkel társítják. A betegség jellegzetes jelei: szabálytalan fiasítás, sapkás és fedetlen alveolusok, amelyek mozaik mintát képeznek, gyöngyházfehér lárvák, behajtva vs. cellájukban. A fertőzött lárvák általában elzáródásuk előtt elpusztulnak, és savanyú szagot árasztanak. Bizonyos esetekben azonban nem bocsátanak ki szagot, vagy csak halvány szagot bocsátanak ki.

A fertőzött lárvák sárgává, majd barnává válnak, és légcső-rendszerük jól láthatóvá válik, és fényes, a testen átnyúló vénás hálózat jelenik meg. A bomlás előrehaladott stádiumába került lárvák száraz, pikkelyes, gumiszerű állagot alkotnak a sejtben; ezeket a pikkelyes tömegeket a dolgozók elég könnyen eltávolíthatják.

Száradás előtt a lárvák megpuhulnak és szemcsés konzisztenciát kapnak. A diagnózis megerősíthető a lárva gallyal, gyufával vagy fogpiszkálóval történő keverésével. Ha európai szaporítóállomány, akkor a lárva meglehetősen morzsás állagú, és nem hozza létre az amerikai szaporítófára jellemző hosszú nyálkás szálat.

A diagnózist mikrobiológiai tenyészetekkel vagy molekuláris analízissel lehet megerősíteni. A méhész a betegséggel kapcsolatos további információkért fordulhat a tartományi méhészhez vagy az illetékes méhészeti hatósághoz.

Vakolt fióka

A fiasítás rendszeres ellenőrzése ajánlott. Ha fertőzött, a fiasítás szabálytalan, mozaik és lárva mumifikálódott fehér vagy fekete látható az alveolusokban. A munkások által az operulában megrágott kis lyukak jelenléte a betegség korai jele. A dolgozók végül bezárják a cellákat, hogy eltüntessék a múmiákat, kiutasítva őket a kaptár bejáratán keresztül, vagy visszadobva őket a tálcára. Javasoljuk továbbá a pollencsapdák (a kaptár alatti) átvizsgálását a múmiák lehetséges jelenlétének felderítése érdekében. A megfigyelést fokozni kell a tavasz hideg és nagyon nedves napjaiban.

Pontos fióka

A fióka rendszeres ellenőrzése elengedhetetlen, különösen tavasszal és nyár elején, amikor a takarmányozás korlátozott. A betegség jelei: mozaik fióka, áttört kopoltyúk, folyadékkal töltött kis tasakokra emlékeztető lárvák. Egyes sejtek lezárt állapotban maradhatnak, miután a szomszédos sejtekből kikeltek a fiókák. A fertőzött lárvák általában a prenymphalis stádiumban pusztulnak el. Idő előtt fehérből sárgává válnak, majd haláluk után sötétbarnává válnak. Az elhalt lárvák általában egyenesek a sejtjeikben, sötétebb fejűek. Idővel a lárva maradványai végül kiszáradnak, és morzsalékos skálát képeznek, amelyet könnyű kitermelni a sejt alján.

Nosemosis

A nosemosis két mikrosporidia (gomba) parazita által okozott betegség: Nosema apis; újabban, Nosema ceranae. Kanadában ez a felnőtt mézelő méhek leggyakoribb betegsége. A Nosema apis általában tavasszal éri el maximális bőségét, míg a Nosema ceranae az egész szezonban jelen van. A nosemosis általános jelei közé tartozik a fokozatos elnéptelenedés, a népesség lassabb növekedése tavasszal és nyáron, valamint a súlyos téli veszteségek. Méhek fertőzöttek Nosema apis vérhas jeleit mutathatja, és széttartott szárnyaikkal nem képesek repülni, és megfigyelhető, hogy a kaptár előtt mászik a földön; duzzadt a hasuk, és már nincs reflexük a szúrásra. A vérhas és a mászó viselkedés jelei általában nem észlelhetők Nosema ceranae.

Jelei nosemosis nem feltétlenül vizuálisan detektálhatók, különösen enyhe fertőzés esetén. A magatartási jelek a peszticid-mérgezésre emlékeztetnek, a dizentéria pedig gyakran a leromlott élelmiszerboltokhoz társul. Ezért a spórák jelenléte Nosema és számolja meg ezeket a spórákat, hogy megállapítsa, elérik-e az ajánlott cselekvési szintet.

Ideális esetben a mikroszkópos vizsgálatot vagy a molekuláris elemzést diagnosztikai laboratóriumnak kell elvégeznie azoknak a méhészeknek, akik megfelelő oktatásban részesültek a mintavétel, a tárgylemez előkészítés és az azonosítás módszereiről.

A méhész követheti a tartományi méhész, az illetékes méhészeti hatóság vagy egy speciális laboratórium által ajánlott módszereket is, hogy mintákat vegyen és készítsen az elemzéshez és a diagnózis megerősítéséhez. Ilyen esetben a kaptár bejáratánál vagy a kaptár fedelének belső oldalán 30 és 60 méh között kell gyűjtenie. Lehetőleg idősebb takarmányozókat választ, mivel a kaptárfenntartásra kijelölt fiatalabb munkavállalók ritkábban fertőződnek meg. Ahhoz, hogy összetett mintát nyerjen a méhészetből, a méhész körülbelül tíz méhet vehet fel minden egyes telepről (méhészetenként legfeljebb 10 telep). Az elemzéshez vett méhmintákat 50–70% alkoholtartalmú oldatban kell fagyasztani vagy szárítani. Minden mintához mellékelni kell a telep és a méhészet számát, valamint a méhész és egy kapcsolattartó személy nevét.

Tracheális atkák

A légcső atka (Acarapis woodi) egy endoparazita, amely a mézelő méh trachealis rendszerében él és szaporodik, valamint gazdája hemolimfájával táplálkozik. Mindhárom kaszta sebezhető, és a fertőzés megfelelő kezelés nélkül súlyos következményekkel járhat. Ez az atka veszélyezteti a telepek áttelelésének képességét. A fertőzött méheknek szétnyílt a szárnyuk, és megfigyelhető, hogy a kaptár körül mászkálnak a földön. Súlyos fertőzés esetén a fiasítás és a felnőttek számának csökkenése figyelhető meg, ami a méztermelés csökkenését és a telep összeomlását eredményezi.

Felügyelet céljából a méhésznek kora tavasszal vagy ősszel kell méhmintát vennie. Az elvégzett kezelések hatékonyságának értékeléséhez ősszel kell mintákat vennie, ha a kezeléseket tavasszal hajtják végre, vagy különben ősszel kell ezeket a mintákat gyűjteni.

A méhész a következő két mintavételi módszer egyikét alkalmazhatja:

Varroa

Varroa (Varroa destructor) szabad szemmel látható ektoparazita, amely felnőttekkel, lárvákkal és nimfákkal táplálkozik. A fertőzést a következő jellegzetes jelek igazolják: deformálódott szárnyak az újonnan megjelenő méhekben, mozaikfióka és vöröses atkák jelenléte a méheken vagy a fésűkön. Mivel a varroa viszonylag gyakori, rendszeres ellenőrzésre van szükség nemcsak jelenlétének megerősítéséhez, hanem annak megállapításához is, hogy elérték-e az intervenciós küszöböt (az előre kialakított atkák száma), valamint hogy értékeljék a kezelések hatékonyságát (rezisztencia).

Számos mintavételi módszer áll rendelkezésre:

1. A kezelési küszöbértékek elérésének mennyiségi meghatározása

Számítson ragacsos csapdára (24 óra), amely természetesen a kaptár aljára esik

Előnyök: megerősített fertőzés esetén egyszerű és megbízható módszer annak megállapítására, hogy elérték-e a kezelési küszöböt. A ragadós csapda megakadályozza az atkák újbóli bejutását a kaptárba és más méhek újratelepítését.

Hátrányok: ez a módszer megismétli a méhészet látogatását. Az atkákat is nehéz megszámolni, ha a csapdákat több mint 72 órán át hagyják a bennük felhalmozódó törmelék mennyisége miatt.

A módszer leírása:

Előnyök: egyszerű, megbízható, gyors technika a helyszínen, csak egy látogatást igényel.

Hátrányok: a méheket rázással megölik.

A módszer leírása:

A fertőzöttség mértékének meghatározásához használja a következő egyenletet: szorozza meg az atkák számát 1,3-mal, hogy megkapja az atkák tényleges számát, majd ossza el a korrigált számot 3-mal. Például, ha 300 méhet gyűjtöttek be és ha 7 atkát találtak a A tartály alján az atkák tényleges teljes száma 9 (7 x 1,3). A fertőzési arány 3% (9 ÷ 3).

Gyors, könnyen használható és megbízható kézi rázógépek kaphatók a kereskedelemben (forduljon a helyi beszállítóhoz). Kövesse a gyártó utasításait.

Diagnosztikai laboratórium

Gyűjtse össze a tartományi méhész, az illetékes méhészeti hatóság vagy a laboratórium által ajánlott méhek számát, helyezze a méheket egy alkoholtartályba és küldje el a diagnosztikai laboratóriumba.

2. A varroa atkák jelenlétét igazoló minőségi mutatók

Előnyök: módszer, amely csak terepi látogatást igényel. Miután a varroa atkák jelenléte meggyőződött, helyezzen fel ragacsos csapdákat a kaptárak aljára.

Hátrányok: kevésbé pontos módszer, mint a kvantitatív módszerek a kezelés küszöbértékeinek teljesítésének meghatározására.

Éter csapágy

Az éterhengerlés gyors terepi módszer. Ez abból áll, hogy egy üvegedénybe helyezünk 125 ml (½ csésze) méhet (kb. 300) a fiasítási kamrából. Permetezzen három vagy négy fröccs étert (autóipari indítófolyadék) az üvegbe, majd zárja le és rázza egy percig. Forgassa el néhányszor az edényt, majd számolja meg az edény falához és fedeléhez tapadt varroa atkákat. Használja ezt a módszert jól szellőző helyen, és viseljen kesztyűt az éterrel való érintkezés elkerülése érdekében.

Porcukor módszer

Ez a módszer szintén gyors terepi módszer. Két egymásba illesztett üveg használatából áll, amelyek fedelei előzetesen perforáltak. Tegyünk egy edénybe 125 ml (½ csésze) méhet (kb. 300), amelyek a tenyészkamrából származnak. Tegyen 30 ml (2 evőkanál) porcukrot a másik üvegbe, majd óvatosan rázza fel, hogy a méheket megkenje a cukor. Öntsük az így kezelt méheket sík felületre, széltől védve, és számoljuk meg azokat a varroa atkákat, amelyek a méhek távozása után a cukorban maradnak.

Kidobó drón fióka

Ez a módszer bárhol alkalmazható fagyasztott méhmintákkal. Először határozzuk meg a kolónián belüli drónfióka mennyiségét, majd zárjuk le és vonjuk ki 100 sejtből a drónlárvákat/nimfákat, és jegyezzük fel a fertőzött egyedek számát. Számolja az atkákat, megkülönböztetve az éretlen szakaszokat és a kifejlett egyedeket. Hasonlítsa össze a fertőzöttség mértékét a kolónia drónfióka teljes mennyiségével.

3. Iránymutatások a kezelési küszöbökhöz

Az eredmények elérése után vegye figyelembe a varroa elleni védekezésre vonatkozó frissített tartományi ajánlásokban előírt kezelési küszöböt. A méhész felveheti a kapcsolatot a tartományában a méhészeti ügyekért felelős minisztériummal, ha ez utóbbi évente nem ad ki ajánlásokat. A kezelési módszereket mindegyik monitorozási módszerre és két időszakra, május elejére és augusztus végére meghatározzák. A kezelési küszöbértékek csökkenthetők, ha egynél több kártevő van jelen (pl. Varroa és tracheális atka).

A kezelésekkel szembeni ellenálló képesség értékelése akkor szükséges, ha a varroa-fertőzés a beavatkozási küszöbértéknél marad vagy súlyosbodik tavasszal az elvégzett kezeléseket követően, és ha a téli veszteségek abnormálisan magasak.

Júniusban figyelje meg az összes méhészetet (mindegyik legalább öt csalánkiütéssel rendelkezik), és használja a legmegfelelőbb ellenőrzési módszert a tavaszi varroa kezelés eredményességének felmérésére.

A méhésznek figyelnie kell bizonyos számú méhészetet, hogy reprezentatív képet kapjon a helyzetről működésének mértékében. Minden méhészetben legalább öt csalánkiütést kell megvizsgálnia augusztus elején a legjobb megfigyelési módszer alkalmazásával annak megállapítására, hogy a kezelési küszöbérték teljesül-e vagy meghaladja-e. Súlyos fertőzés esetén a csalánkiütés olyan súlyos károkat fog szenvedni, hogy nem lesznek képesek megfelelően áttelelni, és valószínűleg végül kihalnak. Kezelje a telepeket kora ősszel vagy a mézes vacsora eltávolítása után a lehető leghamarabb, hogy megvédje a méheket a telelés során. Ha a mézes vacsorák még mindig a kaptárban vannak, és az atkák száma magas, a mézes vacsorákat azonnal el kell távolítani, és a telepet kezelni kell. A szeptember vagy október végén végzett kezelések kevésbé hatékonyak, mint a szezon elején.

A kedvezőtlen környezeti viszonyok miatti hőmérséklet-függő kezelések és kémiai kezelések esetén a kezelések hatékonyságának esetleges hiánya miatt, amelyekkel szemben rezisztencia jelentkezhet, erősen ajánlott a kezelés utáni monitorozás. Annak hatékonyságának és annak meghatározása, hogy az ősszel történő utókezelés megfelelő-e (a tenyésztermelés leállítása után). Amikor a késői mézharmat vagy a kedvezőtlen időjárási viszonyok késleltetik a telepek kezelését ősszel, akkor az akaricid termékek hatékonysága veszélybe kerülhet, és a téli mortalitás magas lehet.

Ezért erősen ajánlott figyelemmel kísérni és rögzíteni a környezeti feltételeket.

A varroa atkák évente több generáción át tudnak esni, és ennek eredményeként gyorsan rezisztenciát szereznek bizonyos kezelésekkel szemben. A méhésznek ezért szoros felügyeletet kell gyakorolnia annak érdekében, hogy észlelni tudja az ellenállás megjelenését, ha van ilyen.

Kis méhkas bogár

A kicsi kaptárbogár petéi, lárvái és kifejlett egyedei, valamint a kártevő lárvái által okozott károk megfigyelhetők telepeken, kitett kaptárakban vagy import méhcsomagokban.

A méhésznek rendszeresen ellenőriznie kell a kaptárakat, hogy megbizonyosodjon arról, hogy a kis méhkas bogár nem fertőzte meg őket. A kaptár kinyitása után haladéktalanul meg kell vizsgálnia a fiókák tetejét (különösen a keretek végei felé), mivel a felnőtt csalánkiütésben lévő kis bogarak elrugaszkodnak a fénytől. Felnőttek és lárvák lehetnek a tálcán vagy a fiókák kereteinek felületén, a dolgozók között. Keresse meg a felnőttek jelenlétét, amint a fiókát megdönti, hogy a tálca ki legyen téve.

Monitorozásra van szükség a kitermelő létesítményekben is.

Különböző típusú csapdák állnak rendelkezésre a kicsi kaptárbogár felderítésére és megfigyelésére. A méhész felveheti a kapcsolatot méhészeti felszerelés-forgalmazójával, hogy megtudja a különféle lehetőségeket, vagy a tartományi méhészével vagy illetékes méhészeti hatóságával az e károsító szervezetek elleni küzdelemre vonatkozó ajánlásokért.

A felnőtt körülbelül 5,5 mm hosszú és 3,2 mm széles és sötétbarna. Az antennák klub alakúak. A lárva hasonlít a viaszmolyéra, de teljes hosszában tüskés és három pár igazi lába van (a viaszmoly lárvának három igazi pár lába és szára van). A kicsi kaptárbogár lárvája nem sző egy gubót a kaptárban. Felnőttek és lárvák szintén megtalálhatók az elhalt telepekben és a kitett telep anyagában.

Ha a méhész gyanítja, hogy kicsi a kaptárbogárfertőzés, akkor a méhésznek haladéktalanul kapcsolatba kell lépnie a tartományi méhésszel vagy a megfelelő méhészeti hatósággal. Minden bejelentési eljárást be kell tartania, és be kell tartania az engedélyek kiadására és a karanténintézkedések alkalmazására vonatkozó szabályokat.

A méhésznek szigorítania kell a felügyeletet, ha értesítést kapnak a régiójában megerősített fertőzési esetekről.

1. ábra A mézelő méheket érintő kártevők és betegségek megfigyelése és kimutatása

kártevők

A diagram leírása - 1. ábra: A mézelő méheket érintő kártevők és betegségek megfigyelése és kimutatása

A 1.ábra címe "A méheket érintő károsító szervezetek és betegségek megfigyelése és felderítése" címet viseli, és a lehetséges diagnózisok diagramja a megfigyelt jelek szerint